1 簡介
本產品是用競爭酶聯免疫反應原理來檢測生物樣本中的氯黴素含量。本試劑盒包含檢測所需的所有試劑——包括標準品。
檢測數量:96孔(包括標準品)
檢測時間:20分鍾
2 應用範圍
本試劑盒可用於檢測奶、組織(肌肉、肝髒、腎髒、蝦類、蟹類、魚類)、尿液、血液和飼料樣本中的氯黴素。
3 原理
反應在包被了氯黴素抗體的固相微孔板上進行。標準品、樣(yang)品(pin)和(he)酶(mei)標(biao)物(wu)加(jia)入(ru)到(dao)微(wei)孔(kong)中(zhong),第(di)一(yi)次(ci)溫(wen)浴(yu)時(shi),標(biao)準(zhun)品(pin)或(huo)樣(yang)品(pin)中(zhong)的(de)遊(you)離(li)氯(lv)黴(mei)素(su)分(fen)子(zi)與(yu)酶(mei)標(biao)記(ji)的(de)氯(lv)黴(mei)素(su)分(fen)子(zi)競(jing)爭(zheng)結(jie)合(he)吸(xi)附(fu)在(zai)固(gu)相(xiang)上(shang)的(de)抗(kang)體(ti)結(jie)合(he)位(wei)點(dian)。沒(mei)有(you)結(jie)合(he)的(de)分(fen)子(zi)被(bei)清(qing)洗(xi)除(chu)去(qu),通(tong)過(guo)加(jia)入(ru)顯(xian)色(se)底(di)物(wu)來(lai)確(que)定(ding)已(yi)經(jing)結(jie)合(he)的(de)酶(mei)的(de)活(huo)性(xing),酶(mei)使(shi)得(de)無(wu)色(se)的(de)底(di)物(wu)轉(zhuan)變(bian)成(cheng)蘭(lan)色(se),加(jia)入(ru)反(fan)應(ying)終(zhong)止(zhi)液(ye)使(shi)得(de)蘭(lan)色(se)變(bian)為(wei)黃(huang)色(se),用(yong)酶(mei)標(biao)儀(yi)在(zai)450nm處讀出吸光度。顏色的深淺可以轉換為樣品中氯黴素的不同濃度。
4 試劑組成
微孔板:96孔(12×8,可分拆)直接包被氯黴素抗體
標準品:0.025ng/mL; 0.1ng/mL; 0.25ng/mL; 1ng/mL; 4ng/mL; 1ml含0.1ug/ml濃度的氯黴素標準品1瓶
酶標物凍幹粉:玻璃瓶 1瓶
酶標物稀釋液:13ml塑料瓶1瓶(棕色)
顯色劑:13ml 塑料瓶1瓶(棕色)
終止液:13ml塑料瓶1瓶(白色)
清洗液10×:50ml塑料瓶1瓶(白色)
氯黴素樣品稀釋液10×:50ml塑料瓶1瓶(白色)
5 需要但未提供的材料
樣品前處理需要:
- 甲醇、乙酸乙酯、正己烷、異辛烷、三氯甲烷
- 組織勻漿機、天平、水浴鍋,搖床(振蕩器)
- 離心機,氮吹儀,混合振蕩器
檢測中需要:
- 20~200ul移液槍和槍頭
- 50~200ul多通道移液槍和槍頭
- 配備450nm濾光片的酶標儀
- 擠瓶
6 注意事項
- 終止液含有硫酸,注意不要接觸皮膚
- 顯色劑有毒,不要接觸皮膚;如果接觸請用水衝洗
- 不要在有效期過後使用試劑
- 不同批號的試劑不要混用
7 保存
- 2~8℃保存,切勿冰凍
- 沒有使用的微孔條請務必用幹燥劑保存在密封的袋子中
8 樣品前處理
8.1尿樣
8.1.1直接法
— 200µl尿樣與800µl氯黴素樣品稀釋液混合
— 混合物在2000g,離心10min
— 取50µl上清用於檢測
— 檢測最終結果應乘以稀釋倍數5
8.1.2抽提法
建議對“深色/不潔”尿樣采用
— 1ml尿液用1M乙酸調PH值到4.8
— 加入25µl蝸牛液(Helix pomatia juice),37℃下溫浴過夜或55℃下溫浴2小時。
— 冷卻至室溫,並將PH值調節到7±0.5
— 加入2ml乙酸乙酯,混合1min。靜置5-10 min分層。
— 將1ml上層液(乙酸乙酯層)轉移到幹淨的試管中。
— 50℃,氮吹儀吹幹
— 用200氯黴素樣品稀釋液溶解,混勻
— 取50µl用於檢測
— 檢測最終結果應乘以稀釋倍數0.4
8.2 血清/血漿樣品
— 1ml血清/血漿加入2ml乙酸乙酯混合1min,靜置5-10min,令其發生相分離
— 取1ml乙酸乙酯於一新的試管
— 50℃,氮吹儀吹幹
— 加入500µl氯黴素樣品稀釋液混合均勻
— 取50µl用於檢測
— 檢測最終結果應乘以稀釋倍數1
8.3 奶
8.3.1
— 2000g,離心15min,去除上層脂肪
— 取50ul用於檢測。
注意:檢測酸奶時,應調樣品PH值至中性。
8.3.2
— 取5ml牛奶樣品於一試管中
— 2000g,離心15min,去除上層脂肪
— 取2.5ml脫脂奶於一新的試管
— 加入5ml乙酸乙酯,渦旋混合1min,靜置10min
— 取4ml乙酸乙酯上層到幹淨玻璃管中
— 50℃,氮吹儀吹幹
— 用200µl氯黴素樣品稀釋液溶解
— 取50µl用於檢測
— 計算最終結果應乘以稀釋倍數0.1
(脫脂奶粉處理方法:將60ml蒸餾水加入10g脫脂奶粉,再按上述步驟操作)
8.4蛋類樣品
— 取1g勻漿全蛋
— 加入6ml乙酸乙酯渦旋混合1min
— 2000g離心10min
— 取3ml上層乙酸乙酯於一新的試管
— 50℃,氮吹儀吹幹
— 加入1ml異辛烷/三氯甲烷(2:3,V/V),再加入500µl氯黴素樣品稀釋液,渦旋混合1min
— 2000g,離心10min
— 取50µl上層用於檢測
— 計算最終結果應乘以稀釋倍數1
注意:若上層乳化,可將試管置於80℃水浴約5min,並再次進行離心。
8.5 組織樣品(肉類、肝髒、蝦類、蟹類、魚類)
方法一:
— 取3g勻漿樣品
— 加入6ml乙酸乙酯渦旋混合,振搖10min
— 2000g,離心10min
— 取4ml乙酸乙酯上層於一新的試管
— 50℃,氮吹儀吹幹
— 加入1ml異辛烷/三氯甲烷(2:3,V/V),再加入1ml氯黴素樣品稀釋液,渦旋混合1min
— 2000g,離心10min
— 吸取50µl上層用於檢測。
— 計算最終結果應乘以稀釋倍數0.5
注意:若上層乳化,可將試管置於水浴(80℃ )約5min,並再次進行離心。
另:可以用正己烷代替異辛烷/三氯甲烷。若采用正己烷,離心後應完全去除上層正己烷,移取50µl下層用於檢測。
方法二:用於蝦、魚、蟹類的大樣品量處理
— 10g勻漿化樣品與20ml乙酸乙酯混合10min
— 2000g,離心10min(或用濾紙過濾)
— 取10ml乙酸乙酯層於一新的試管
— 50℃,氮吹儀吹幹
— 加入2ml異辛烷/三氯甲烷(2:3,V/V)(或2ml正己烷,參見方法一),並加入1ml氯黴素樣品稀釋液,充分混合。若發現乳化,可將試管在水浴(80℃)中加熱(5min)。並將此溶液在2000g下離心10min。
— 利用巴斯德滴管轉移上層清夜(若用正己烷,清夜則在下層)於清潔玻璃管中。
— 再加入1ml異辛烷/三氯甲烷(2:3,V/V)(或1ml正己烷)。混合上述溶液並離心分離如上。
— 吸取50µl上層用於檢測(若用正己烷,清液則在下層)。
注:檢測最終結果乘以稀釋倍數0.2
8.6 蜂產品
8.6.1蜂蜜樣品
— 3g樣品與3ml蒸餾水充分混合
— 加入6ml乙酸乙酯充分振蕩混合10min
— 2000g離心10min
— 轉移4ml上層乙酸乙酯於一新的試管
— 50℃,氮吹儀吹幹
— 殘留物充分溶解於1ml氯黴素樣品稀釋液
— 吸取50µl用於檢測
對於不純淨的蜂蜜應進行脫脂處理:
— 將氮流蒸發後的殘留物溶於1ml異辛烷/三氯甲烷(2:3,V/V),加入1ml樣品稀釋液
— 渦旋混合1min,2000g,離心10min
注意:若上層乳化,可將試管置於水浴(80℃)約5min,並再次進行離心。
— 吸取50µl上層用於檢測。
— 檢測最終結果應乘以稀釋倍數0.5。
另:可以用正己烷代替異辛烷/三氯甲烷。若采用正己烷,離心後應完全去除上層正己烷層,移取50µl下層用於檢測。
8.6.2蜂王漿
— 1g蜂王漿與4ml抽提緩衝液(10.1g 1-庚烷磺酸,11.4g Na3PO4.12H2O。溶於1000ml蒸餾水中,用H3PO4調整pH2.0)混合30min
— 3000g離心10min
— 取2.5ml上清液用Oasis HLB柱(60mg Waters公司WAT094226)按以下固相抽提步驟純化:
— 依次用1ml100%甲醇和1ml蒸餾水活化該柱(樣品過柱前柱不能過幹,否則需要重複活化)
— 將上述2.5ml上清液真空抽濾過柱
— 用3ml蒸餾水及3ml 50%(1:1;V:V)甲醇洗柱,真空幹柱
— 用1ml100%甲醇洗脫,用幹淨玻璃管收集洗脫液
— 洗脫液在溫和氮流下蒸發甲醇
— 樣品殘留物溶入0.5ml氯黴素樣品稀釋液中
— 吸取50µl用於檢測
— 檢測最終結果乘以稀釋倍數1
注意:若無真空泵,可使用正壓洗滌柱子;
流速均設定為1ml/min。
8.7 飼料樣品
— 5g樣品與20ml蒸餾水混勻
— 取5ml混合物到幹淨玻管中,加入10ml乙酸乙酯混合2min
— 2000g離心10min
— 轉移5ml乙酸乙酯(上層)到幹淨玻管中,50℃溫和的氮流下蒸發
— 殘留物溶於0.5ml異辛烷/三氯甲烷(2:3,V/V),加入0.5ml氯黴素樣品稀釋液,混合液渦旋1min,
— 2000g離心10min
— 取50µl上層用於檢測
— 檢測最終結果應乘以稀釋倍數1
注:若發現乳化,可將試管在水浴(80℃)中加熱(5min),並將此溶液再次離心,吸取50µl上層清液檢測
注意:本說明書提供的樣品前處理方法僅作參考,實驗人員可以根據自己的經驗作改善以提高檢測準確度。
9 工作液準備
為了避免汙染,建議在配置標準品不要與試劑檢測工作在同一室內進行,並使用不同的移液槍。
注意:整套標準品應該在每個檢測實驗前臨時配置!!
氯黴素樣品稀釋液:用蒸餾水10倍稀釋(1+9),注意:如果出現結晶,請將溶液放於室溫下搖動,重新完全溶解。
標準品配製:使用已經稀釋的氯黴素樣品稀釋液。
- 10ng/ml濃度:100ng/ml原始濃度溶液100ul +稀釋液900ul(1:10)
- 4ng/ml濃度:10ng/ml溶液400ul +稀釋液600ul(1:2.5)
- 1ng/ml濃度:4ng/ml 溶液 200ul +稀釋液600ul(1:4)
- 0.25ng/ml濃度:1ng/ml溶液200ul+稀釋液600ul(1:4)
- 0.1ng/ml濃度:0.25ng/ml溶液400ul+稀釋液600ul(1:2.5)
- 0.025ng/ml濃度:0.1ng/ml溶液200ul+稀釋液600ul(1:4)
此氯黴素樣品稀釋液也應當用於B0孔。
酶標物:實驗前用12mL酶標物稀釋液溶解,並充分混勻。靜置8小時(或過夜,但至少4小時),切勿渦旋混勻。
清洗液:用蒸餾水10倍稀釋(1+9)。注意:如果出現結晶,請將溶液放於室溫下搖動,重新完全溶解。
顯色劑:備用。
終止液:備用。
10 分析步驟
10.1 注意事項
- 使用前請將試劑盒恢複到室溫(20~25℃)
- 使用後請立即將所有試劑放回2~8℃
- 請不要改動分析步驟,尤其:
- 不要在低於20℃條件下溫浴
- 要使用準確和精確的移液槍和適合的槍頭
- 一旦開始實驗,完成所有步驟,不要中斷
- ELISA結果的重複性跟洗板的效果和一致性非常密切,請遵循操作方法
- 不同的樣品和標準品使用一次性槍頭以避免交叉汙染
- 不要讓槍頭和微孔中的溶液或內避接觸
10.2 檢測程序
1. 用記錄表記錄B0,標準品和樣品的位置,要求做雙孔平行。
2. 加入標準品和樣品:
-50ul氯黴素樣品稀釋液加入B0孔
-標準品或樣品50ul加入微孔
3. 用多通道移液槍在所有微孔中加入100ul酶標物溶液。
4. 晃動酶標板。
5. 室溫(20~25℃)下溫浴10min。溫浴過程中建議晃動酶標板2~3次。
6. 清洗步驟:
- 倒去微孔中的溶液
- 用擠瓶將所有微孔加滿清洗液,然後倒去
- 在吸水紙上拍打除去殘留溶液
重複清洗四遍。
不要讓微孔幹燥。
7. 用多通道移液槍在所有微孔中加入100ul反應液。
8. 輕輕晃動酶標板。
9. 室溫(20~25℃)下溫浴10min。
10. 用多通道移液槍在所有微孔中加入100ul的終止液。
11. 輕輕晃動酶標板。
12. 在450nm下檢測吸光度,結果在10min內讀取最佳,30min內有效。
11 結果計算
- 計算最大結合率(B0)、標準品和樣品的平均吸光度
- 根據以下公式來計算標準品和樣品的結合率
=B/B0 (%)
標準品(或樣品)吸光度
×100
最大結合孔吸光度
- 根據標準品的B/B0值在半對數曲線中畫出標準曲線
- 獲得樣品的B/B0值後在標準曲線上可以得到對應的氯黴素濃度值ppb(ug/kg或ug/L),實際濃度還要乘上稀釋倍數。
12檢測下限
組織 0.1ng/g
尿液和奶樣 0.2ng/mL
13 特異性
|
分子
|
交叉反應%
|
|
氯黴素
|
100
|
|
琥珀氯黴素
|
92
|
|
氯黴素-葡萄糖苷酸
|
57
|
|
阿莫西林
|
< 0.1
|
14標準曲線模型
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